包虫病 ( hydatid disease ) 核酸检测试剂盒 (荧光 PCR 法)说明书
货号: C01720
规格: 50T
英文名称: Diagnostic Kit for hydatid disease DNA( Real- Time PCR Method)
预期用途
本试剂盒适用于检测粪便等标本中包虫病 DNA ,适用于包虫病感染的辅助诊断。其检测结果仅供参考。
检测原理
本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对包虫病特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对包虫病的DNA 进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
试剂组成
包装规格 | 50T/盒 |
hydatid 反应液 | 500μL×2 管 |
酶液 | 50μL×1 管 |
hydatid 阳性质控品 | 50μL ×1 管 |
阴性质控品 | 250μL ×1 管 |
说明:不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
储存条件及有效期
-20℃±5℃ ,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
适用仪器
ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P 、LightCycler、Bio-Rad 、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
标本采集
取待检动物粪便取 1g 左右。
保存和运输
上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输,严禁反复冻融。
使用方法
1. 样品处理(样本处理区)
1.1 样本前处理
组织样品:每份组织分别从 3 个不同的位置称取样品约 1g ,手术剪剪碎混匀后取 0.5g 于研磨器中研磨,加入 1.5mL 生理盐水后继续研磨,待匀浆后转至 1.5mL 灭菌离心管中,8000rpm 离心 2min,取上清液 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中;咽拭子样品直接取 100μL 于 1.5mL 灭菌离心管中。
1.2 核酸提取
推荐采用核酸提取或纯化试剂 (磁珠法或离心柱法) 进行核酸提取,请按照试剂说明书进行操作。
2. 试剂配制(试剂准备区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 10 份,多配制 1 份) ,每测试反应体系配制如下表:
试剂 | hydatid 反应液 | 酶液 |
用量 (样本数为 N) | 20μL | 1μL |
将混合好的测试反应液分装到 PCR 反应管中,20uL/管。
3. 加样(样本处理区)
将步骤 1 提取的核酸、阳性质控品、阴性质控品各取 5μL ,分别加入相应的反应管中,盖好管盖,混匀, 短暂离心。
4. PCR 扩增(核酸扩增区)
4. 1 将待检测反应管置于荧光定量 PCR 仪反应槽内;
4.2 设置好通道、样品信息,反应体系设置为 25μL;
荧光通道选择:
检测通道 (Reporter Dye) FAM , 淬灭通道 (Quencher Dye) NONE ,ABI 系列仪器请勿选择 ROX 参比荧光,选择 None 即可。
4.3 推荐循环参数设置:
步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 2min | 否 |
2 | 40 cycles | 95℃ 60℃ | 15sec 30sec | 否 是 |
5. 结果分析判定
5.1 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~ 15 范围内调节) 、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节) ,以及 Threshold 的Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照) ,重新分析结果。
5.2 结果判断
阳性:检测通道 Ct 值≤40 ,且曲线有明显的指数增长曲线;
阴性:样本检测结果 Ct 值>40 或无 Ct 值。
6. 质控标准
阴性质控品:阴性对照无特异性扩增曲线或无 Ct 值;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数增长期,且 Ct 值≤32;
以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
7. 检测方法的局限性
1.样本检测结果与样本收集、处理、运送以及保存质量有关;
2.样本提取过程中没有控制好交叉污染,会出现假阳性结果;
3.阳性对照、扩增产物泄漏,会导致假阳性结果;
4.病原体在流行过程中基因突变、重组,会导致假阴性结果;
5.不同的提取方法存在提取效率差异,会导致假阴性结果;
6.试剂运输,保存不当或试剂配制不准确引起的试剂检测效能下降,出现假阴性或定量检测不准确的结果;
7.本检测结果仅供参考,如须确诊请结合临床症状以及其他检测手段。
注意事项
1.所有操作严格按照说明书进行;
2.试剂盒内各种组分使用前应自然融化,完全混匀并短暂离心;
3.反应液应避光保存;
4.反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
5.使用一次性吸头、一次性手套和各区专用工作服;
6.样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行, 以免交叉污染;
7.实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
8.试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全通则》进行处理。