Bradford蛋白浓度测定试剂盒
货号:D02150
规格:2500微孔/10000微孔
保存:开封使用后请密封保存,本试剂盒自订购之日起九个月内有效。
产品内容:
组成 | 2500微孔 | 10000微孔 | 保存 |
100mL | 100ml*4 | 2-8℃ | |
PBS稀释液 | 30mL | 120ml | RT |
1mL | 1ml*4 | -20℃ |
产品简介:
考马斯亮兰G-250染料在酸性溶液中与蛋白质结合,使染料最大吸收峰的位置(Imax)由465nm变为595nm,在一定的浓度范围内,测定的吸光度值A595与蛋白质浓度成正比。Bradford法测定蛋白浓度不受绝大部分样品中的化学物质的影响,样品中巯基乙醇的浓度可高达1M,二硫苏糖醇的浓度可高达5mM,但受略高浓度的去垢剂影响,需确保SDS的浓度低于0.1%,Triton X-100低于0.1%,Tween 20、60、80低于0.06%。
操作说明:
一.微孔酶标仪法
1. 完全融化蛋白标准品,取10μL稀释至250μL ,使终浓度为0.2mg/mL。待测蛋白样品在什么溶液中,标准品也宜用什么溶液稀释。为了简便起见,也可以用0.9%NaCl或PBS稀释标准品。
2. 5×G250染色液使用前请颠倒3-5次混匀,取1mL 5×G250染色液,加入4mL双蒸水,混匀成1×G250染色液,此1×G250染色液可在4℃保存一周。
3. 将标准品按0、2、4、6、8、12、16、20μL分别加到96孔板中,加PBS稀释液补足至20μL。
4. 将样品作适当稀释(最好多做几个梯度,如做2倍、4倍、8倍等梯度稀释),加20μL到96孔板的样品孔中。由于移液器在取小量体积液体时有误差,标准曲线前面的点可能不很准确,所以尽可能让样品点落在标准曲线1/2后。
5. 各孔加入200μL稀释后的1×G250染色液,室温放置3-5分钟。
6. 用酶标仪测定A595,或560-610nm之间的其它波长的吸光度。
7. 根据标准曲线计算出样品中的蛋白浓度。
二.分光光度计法
如无酶标仪,染色反应可在离心管中进行,反应液混匀后加入比色皿中,使用分光光度计测定吸光值。
步骤如下:
1. 取八支(或者更多)干净的10mL离心管,标记管号。
2. 取100μL BSA加入2.4mL PBS稀释至终浓度为0.2mg/mL。
3. 5×G250染色液使用前请颠倒3-5次混匀,取10mL 5×G250染色液,加入40mL双蒸水,混匀成1×G250染色液,此1×G250染色液可在4℃保存一周。
4. 按下表加入试剂(以每孔5mL计,多余的可用于清洗比色皿)
离心管号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7(样品管1) | 8(样品管2) |
标准蛋白BSA (0.2mg/mL) | 0μL | 100μL | 200μL | 300μL | 400μL | 500μL | 500μL适当稀释的样品1 | 500μL适当稀释的样品2 |
1×PBS | 500μL | 400μL | 300μL | 200μL | 100μL | 0μL | 0μL | 0μL |
1×G250染色液 | 5mL | 5mL | 5mL | 5mL | 5mL | 5mL | 5mL | 5mL |
5. 反应3分钟后测OD值。为了实验的准确性,可每间隔2分钟加一管染色液,每间隔2分钟测一管OD值。如下表:
离心管号 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 | 7 | 8 | …… |
加染色液(第n分钟) | 0 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 | 12 | 14 | |
测OD值(第n分钟) | 3 | 5 | 7 | 9 | 11 | 13 | 15 | 17 | …… |
- 测定
例如室温反应三分钟后,使用伯乐酶标仪680,单波长,可用570nm测得。
以横轴BSA的终浓度,纵轴OD值,绘制y=ax+c曲线