细菌RNA提取试剂盒(DNase I)说明书
货号:M03240
规格:50T
保存:RT,有效期1年。(DNase I及10×Reaction Buffer -20℃保存。)
产品组成:
名称 | 规格 | 保存 |
DNase I(1U/μL) | 1000U | -20℃ |
10×Reaction Buffer | 1000 μL | -20℃ |
Buffer RL | 35mL | RT |
Buffer RW1 | 40mL | RT |
Buffer RW2(concentrate) | 11mL | RT |
RNase-Free Water | 10mL | RT |
Spin Columns FL with Collection Tubes | 50 | RT |
Spin Columns RM with Collection Tubes | 50 | RT |
RNase-Free Centrifuge Tubes(1.5 mL) | 100 | RT |
产品简介:
本试剂盒采用高效、专一结合核酸的离心吸附柱和独特的缓冲系统,可从细菌或培养的动物细胞中快速提取总RNA。30-40分钟内即可完成反应,提取的总RNA纯度极高,没有蛋白质和其他污染,适用于RT-PCR、Real-Time RT-PCR、芯片分析、体外翻译等实验。
自备试剂:
溶菌酶、TE缓冲液、β-巯基乙醇、无水乙醇(新开封或提取RNA专用)
操作步骤:
- 4℃ 12,000 rpm(~13,400×g)离心2分钟收集菌体(菌体量最大不超过1×109),小心去除所有上清。
注意:上清如果有残留,会影响后续的消化过程。
- 用含有溶菌酶的100 μL TE缓冲液彻底重悬菌体,室温孵育。具体配方和孵育时间如下:
样本类型 | TE缓冲液中溶菌酶的终浓度 | 孵育时间 |
G-细菌 | 400μg/mL | 3-5min |
G+细菌 | 3mg/mL | 5-10min |
- 加入350 μL Buffer RL(使用前请检查是否加入β-巯基乙醇),涡旋震荡混匀(此步骤可能出现不溶性沉淀),将溶液与沉淀全部加入到已装入收集管的过滤柱(Spin Columns FL)中,12,000 rpm离心2分钟。
注:Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇至终浓度为1%,如1 ml Buffer RL加10 μL β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL 4℃可保存1个月,如出现沉淀,请加热溶解后使用。
- 向上步得到的滤液中加入250 μL无水乙醇,混匀(此时可能会出现沉淀)。将得到的溶液和沉淀一起转入已装入收集管的吸附柱(Spin Columns RM)中,12,000 rpm离心1分钟,弃掉废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 向吸附柱中加入350 μL Buffer RW1,12,000 rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 配制DNase I 混合液:取52 μL RNase-Free Water,向其中加入8 μL 10×Reaction Buffer和20 μL DNase I(1 U/μL),混匀,配制成终体积为80 μL的反应液。
- 向吸附柱中直接加入80 μL DNase I 混合液,20-30℃孵育15分钟。
- 向吸附柱中加入350 μL Buffer RW1,12,000 rpm离心1分钟,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 向吸附柱中加入500 μL Buffer RW2(使用前检查是否加入无水乙醇), 12,000 rpm离心1分钟,弃废液。
- 重复步骤9。
- 将吸附柱放回收集管中,12,000 rpm离心2分钟。
注意:这一步的目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR等)。
- 将吸附柱装入新的RNase-Free的收集管中,向吸附膜的中间加入30-50 μL RNase-Free Water,室温放置1分钟,12,000 rpm离心1分钟,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。
注意:1)RNase-Free Water体积不应小于30 μL,体积过小影响回收率。
2)如果要提高RNA的产量,可用30-50 μL新的RNase-Free Water重复步骤12。
3)如果要提高RNA浓度,可将得到的溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤12
注意事项:
- 实验过程中要预防RNase污染,应注意以下几方面:
- 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染;
- 配制溶液应使用无RNase的水;
- 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。
- 第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
- 如未特殊说明,所有离心步骤均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。