产品详情
无内毒素质粒大量提取试剂盒说明书
货号:M03410
规格:10T
保存:RT,复检期1年。(注:RNase A以附件形式发货,收到未使用前请-20℃保存;内毒素清除试剂常温保存,开盖使用后请于2-8℃保存)
产品组成:
组分 | 10T | 保存 |
RNase A | 300μL×2 | -20℃保存 |
内毒素清除试剂 | 100mL | 2-8℃保存 |
溶液P1 | 40mL | RT保存 |
溶液P2 | 40mL | RT保存 |
溶液P3 | 40mL | RT保存 |
漂洗液 | 20mL×2 | RT保存 |
洗脱液 | 20mL | RT保存 |
吸附柱(含收集管) | 10套 | RT保存 |
收集管 | 10个 | RT保存 |
产品说明:
本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞,根据离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA的原理特异性提取质粒DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料能高效、专一地吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。内毒素清除剂可最大限度地除去内毒素。从50-100mL大肠杆菌LB培养液中,可快速提取150-250μg高纯度质粒DNA,提取率达85-90%。使用本试剂盒提取的质粒DNA纯度高,可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、连接和转化等试验。
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签(每瓶需单独加入60mL无水乙醇)。P1在使用前先加入RNase A(将试剂盒中提供的RNase A全部加入),混匀,置于2-8℃保存。如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
第一次开盖使用后请将内毒素清除试剂于2-8℃保存,可以缩短使用时的冰上预冷时间。
操作步骤(仅供参考):
- 取50-100mL细菌培养物,11000rpm离心1min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。
- 向留有菌体沉淀的离心管中加入4mL P1(请先检查是否已加入RNase A),使用移液器或旋涡振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意:如菌块未彻底混匀,会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低。
- 向离心管中加入4mL P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意:混匀一定要温和,以免污染细菌基因组DNA,此时菌液应变得清亮粘稠,作用时间不要超过5min,以免质粒被破坏。
- 向离心管中加入4mL P3,立即温和地上下翻转6-8次,充分混匀,此时会出现白色絮状沉淀。11000rpm离心10min,用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中,尽量不要吸出沉淀。注意:P3加入后应立即混合,避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀,可再次离心后取上清。
- 加入上清1/5体积的冰上预冷内毒素清除剂,振荡混匀溶液变浑浊,冰浴5-10min至溶液变清亮。
- 42℃水浴5min,不时振荡,溶液又变浑浊,11000rpm室温离心5min,溶液应分为两相,上层水相含质粒DNA,下层油相含内毒素。
- 将含质粒DNA的上层水相转移至新管,弃下层油相,注意不要吸入油状相。重复抽提三次,即重复步骤5-7三次。
- 加入0.5倍上清体积的无水乙醇,充分混匀后加入吸附柱(吸附柱加入收集管中),室温放置2min,11000rpm离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
- 向吸附柱中加入7mL漂洗液(使用前请先检查是否已加入无水乙醇),11000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
- 向吸附柱中加入7mL漂洗液,11000rpm离心2min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
- 11000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续的实验,如酶切、PCR等。
- 将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加1-2mL经65℃水浴预热的洗脱液,室温放置2min,11000rpm离心2min。
- 为增加质粒的回收效率,可将洗脱液重新加入吸附柱中,室温放置2min,11000rpm离心2min。
注意事项:
- 使用前请先检查P2和P3是否出现混浊,如有混浊现象,可在37℃水浴中加热几分钟,待溶液恢复澄清后再使用。P2、P3、漂洗液使用后应立即拧紧盖子。
- 洗脱缓冲液体积不应少于500μL,体积过小影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影晌,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于7.0会降低洗脱效率,DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
- 如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10kb的大质粒,应加大菌体使用量,使用100-200mL过夜培养物,同时按照比例增加P1、P2和P3的用量,吸附和洗脱时可以适当的延长时间,以增加提取效率。
- DNA浓度及纯度检测:得到的质粒DNA纯度与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA可用琼脂糖疑胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响吸光值,但并不表示纯度低。