产品详情
酵母基因组DNA大提试剂盒说明书
货号:M03680
规格:10T
保存:RT,复检期1年。2-8℃保存时间更长。(注:RNase A、蛋白酶K、酵母破壁酶以附件形式发货,收到未使用前请-20℃保存)
产品组成:
组分 | 10T | 保存 |
RNase A | 300μL×2 | -20℃保存 |
蛋白酶K | 1mL×5 | -20℃保存 |
酵母破壁酶 | 1.25mL×5 | -20℃保存 |
巯基还原剂 | 1.5mL | 2-8℃保存 |
山梨醇Buffer | 25mL×2 | RT保存 |
溶液A | 50mL | RT保存 |
溶液B | 50mL | RT保存 |
漂洗液 | 15mL×2 | RT保存 |
洗脱液 | 20mL | RT保存 |
吸附柱 | 10个 | RT保存 |
收集管 | 20个 | RT保存 |
产品说明:
本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统,提取酵母基因组DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司特有新型材料,能够高效专一吸附DNA,可最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。提取的基因组DNA片段大,纯度高,质量稳定可靠。使用本试剂盒提取的基因组DNA可用于各种常规操作,包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
使用前请先在漂洗液中加入无水乙醇,加入体积请参照瓶体上的标签(每瓶需单独加入45mL无水乙醇)。如非指明,所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。
操作步骤(仅供参考):
- 在离心管中收集酵母细胞20-40mL(不超过109cells),10000rpm离心1min,尽量吸除上清。
- 酵母细胞壁的破除:向酵母菌体中加入9mL山梨醇Buffer。充分悬浮菌体,加入600μL酵母破壁酶和100μL巯基还原剂,充分混匀。30℃处理1-2h,期间可颠倒离心管混匀数次。
- 10000rpm离心lmin,弃上清,收集沉淀。
- 向沉淀中加入5mL溶液A,充分悬浮沉淀,向悬浮液中加入50μL的RNaseA,充分颠倒混匀,室温放置10min。
- 加入500μL的蛋白酶K,充分颠倒混匀。65℃水浴消化30-60min,消化期间可颠倒离心管混匀数次,直至样品消化完全为止。
- 加入5mL溶液B,再加入5mL无水乙醇,充分颠倒混匀,此时可能会出现絮状沉淀,不影响DNA的提取,可将溶液和絮状沉淀都加入吸附柱中,室温放置2min。
- 10000rpm离心2min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
- 向吸附柱中加入7mL漂洗液(使用前请先检查是否己加入无水乙醇)。10000rpm离心1min,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
- 向吸附柱中加入7mL漂洗液,10000rpm离心lmin,弃废液,将吸附柱放入收集管中。
- 10000rpm离心2min,将吸附柱敞口置于室温或50℃温箱放置数分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除,否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR等。
- 将吸附柱放入一个干净的离心管中,向吸附膜中央悬空滴加1-2mL经65℃水浴预热的洗脱液,室温放置5min,10000rpm离心lmin。
- 离心所得洗脱液再加入吸附柱中,10000rpm离心2min,即可得到高质量的基因组DNA。
注意事项:
- 样品应避免反复冻融,否则会导致提取的DNA片段较小且提取量下降。
- 若试剂盒中的溶液出现沉淀,可在65℃水浴中重新溶解后再使用,不影响提取效果。
- 如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况,可适当延长离心时间。
- 洗脱缓冲液的体积最好不少于1mL,体积过小会影响回收效率;洗脱液的pH值对洗脱效率也有影响,若需要用水做洗脱液应保证其pH值在8.0左右(可用NaOH将水的pH值调至此范围),pH值低于7.0会降低洗脱效率。DNA产物应保存在-20℃,以防DNA降解。
- DNA浓度及纯度检测:得到的质粒DNA纯度与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。得到的DNA可用琼脂糖疑胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。OD260/OD280比值应为1.7-1.9,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用去离子水,比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响吸光值,但并不表示纯度低。